Prueba de Aglutinacion en Sangre
Materiales:
1.-Tubo de ensaye con tapón morado
2.-Placa de porcelana excavada
3.-Wiltrobe
4.-Vasal
5.-Centrifuga
6.-Pipeta Pasteur y lóbulo
7.-Palillos de madera
8.- Torundas de algodón alcoholizadas
9.-centrifuga
10.-papel secante y para mesa de laboratorio
11.- Gradilla
12.Reactivos: Tipificadores A, b, d13.
-jeringa
Procedimiento:
Se inicio la practica con la tecnica de venopuncion se extrajo 8ml de sangre despues se traspaso al tuvo con tapon morado luego con la pipeta pasteur se punteo en la placa escabada , ya estando las gotas se le aplican una gota de reactivo tipificador A color Amarillo ,B color azul y D color trasparente se toman despues palillos de madera y se mezclan las gotas luego de esto se empeso a observar la aglutinacion que se veia como si estuviera cortada la sangre ya observada la aglutinacion se lavaron los materiales y se guardaron.
miércoles, 24 de junio de 2009
Practica #8Prueba de Reacciones Febriles en Cerologia
Prueba de Reacciones Febriles en Cerologia
Materiales:
1.-Lámina de cristal para reacciones febriles
2.-Tubo de ensaye con tapón rojo estéril
3.-Palillos de madera 2 o 3 por cada uno
4.-Torundas de algodón
5.- Centrifuga
6.- Microscopio
7.-Pipeta Pasteur con lóbulo
8.- Papel secante
9.- Papel para mesa de laboratorio
10.- Torniquete
11.-Gradillas
12.-ReactivosFebriclinHO AB Bruc. Proteus 0x19º
13.-Paciente y sangre fresca
Procedimiento:
Al inicio de esta practica se observe la técnica de venopuncion para la extracción de sangre ,se coloco la sangre ya extraida en tuvos de tapon morado y rojo, se coloco en la centrifuga el tuvo con tapon rojo para asi poderse separar el plasma ,después se saco de la centrifuga y ya con el plasma separado de coloco el plasma en un tuvo transparente ,luego en una placa de cristal escavada con una pipeta pasteur se punteo plasma y con un palillo de madera se Mezclo el plasma con observe HO A B para despues observar a trasluz la observe de aglutination , luego se observe en el microscopio en el objetivo 10x
Materiales:
1.-Lámina de cristal para reacciones febriles
2.-Tubo de ensaye con tapón rojo estéril
3.-Palillos de madera 2 o 3 por cada uno
4.-Torundas de algodón
5.- Centrifuga
6.- Microscopio
7.-Pipeta Pasteur con lóbulo
8.- Papel secante
9.- Papel para mesa de laboratorio
10.- Torniquete
11.-Gradillas
12.-ReactivosFebriclinHO AB Bruc. Proteus 0x19º
13.-Paciente y sangre fresca
Procedimiento:
Al inicio de esta practica se observe la técnica de venopuncion para la extracción de sangre ,se coloco la sangre ya extraida en tuvos de tapon morado y rojo, se coloco en la centrifuga el tuvo con tapon rojo para asi poderse separar el plasma ,después se saco de la centrifuga y ya con el plasma separado de coloco el plasma en un tuvo transparente ,luego en una placa de cristal escavada con una pipeta pasteur se punteo plasma y con un palillo de madera se Mezclo el plasma con observe HO A B para despues observar a trasluz la observe de aglutination , luego se observe en el microscopio en el objetivo 10x
Practica #7
Observacion microscopia en objetivo 100x con aceite de inmersion
Materiales
porta objetos con tincion de gram
aceite de inmersion
microscopio
Desarrollo
Una vez tenida la laminilla con el frotis se le aplica una gota de aceite de inmersión para poder observar el objetivo en 100X.En este proceso de observación microscópica tenemos la facilidad de poder observar formas esféricas y bacilos los que nos da como resultado observar las coloraciones que se presentan en la tinción de Gram.La presentación en esferas nos indica que estamos observando bacterias denominadas cocos, donde debemos investigar sus características y nombres de importancia medica.Cuando observamos bastoncitos estamos tratando de identificar bacilos donde encontraremos una gran variedad de ellos de forma estructural.
Materiales
porta objetos con tincion de gram
aceite de inmersion
microscopio
Desarrollo
Una vez tenida la laminilla con el frotis se le aplica una gota de aceite de inmersión para poder observar el objetivo en 100X.En este proceso de observación microscópica tenemos la facilidad de poder observar formas esféricas y bacilos los que nos da como resultado observar las coloraciones que se presentan en la tinción de Gram.La presentación en esferas nos indica que estamos observando bacterias denominadas cocos, donde debemos investigar sus características y nombres de importancia medica.Cuando observamos bastoncitos estamos tratando de identificar bacilos donde encontraremos una gran variedad de ellos de forma estructural.
Practica #6 tincion de gram
Tincion de gram
Materiales
Caja de petri
Portaobjetos con frotis
Algodón seco Papel secante
Mecheros de bunsen
Aceite de inmersion
Microscopio
Desarrollo
Realizamos el proceso de tincion utilizando la tincion de gram. que anteriormente ya investigamos para aplicar la tecnica correspondiente en la tincion ( 9 pasos con esta tecnica) la que se basa en el tiempo.Una vez teñida la lamina de cristal verificamos que no se queme con la tintura por lo que nos sirve el frotis y como resultado debemos elaborar otro frotis.Si la laminilla en su termino esta bien teñida acudimos a aplicamos una gota de aceite de inmersion lo montamos en la platina del microscopio lo aseguramos con las pinzas de la platina una vez asegurada realizamos el enfoque en 100X para que nuestra observación microscopica de resultado de poder visualizar las bacterias de formas esfericas y de forma de baston ambas se pueden encontrar en una sola pieza 2, 3, 4 piezas en cadenas largas y agrupadas hasta el tercer plano a estas esferas se les denomina cocos.
Materiales
Caja de petri
Portaobjetos con frotis
Algodón seco Papel secante
Mecheros de bunsen
Aceite de inmersion
Microscopio
Desarrollo
Realizamos el proceso de tincion utilizando la tincion de gram. que anteriormente ya investigamos para aplicar la tecnica correspondiente en la tincion ( 9 pasos con esta tecnica) la que se basa en el tiempo.Una vez teñida la lamina de cristal verificamos que no se queme con la tintura por lo que nos sirve el frotis y como resultado debemos elaborar otro frotis.Si la laminilla en su termino esta bien teñida acudimos a aplicamos una gota de aceite de inmersion lo montamos en la platina del microscopio lo aseguramos con las pinzas de la platina una vez asegurada realizamos el enfoque en 100X para que nuestra observación microscopica de resultado de poder visualizar las bacterias de formas esfericas y de forma de baston ambas se pueden encontrar en una sola pieza 2, 3, 4 piezas en cadenas largas y agrupadas hasta el tercer plano a estas esferas se les denomina cocos.
domingo, 21 de junio de 2009
Practica #5 frotis
FROTIS
Objetivo
Realizar un frotis de las colonias bacterianas que han crecido en los medios de cultivo, el cual deberá ser fino y delgado para poder realizar un proceso de tinción y posteriormente observarlo microscópicamente con aceite de inmersión en objetivo 100x.
Introducción
Solicitaremos los materiales necesarios para realizar la práctica, con nuestro equipo de bioseguridad ya colocado. Pediremos principalmente las cajas Petri con los medios de cultivo, tendremos el debido cuidado al utilizar los materiales y los colocaremos dentro de la zona de esterilización en medio de la mesa, y comenzaremos la práctica No 5 llamada “FROTIS”.
Índice
1.-Objetivo
2.-Introducción
3.- Marco Teórico
*Desarrollo
*Notas
*Dibujos
* Bitácora
*Observaciones personales
4.- Conclusión
5.- Fichas Bibliográficas
Marco Teórico
Materiales:
1.-Cajas Petri con medios de cultivo
2.-Asa Bacteriológica
3.-Vaso de precipitados con agua destilada con 25 ml
4.- 2 Mecheros de Bunsen
5.-Papel secante
6.- 8 portaobjetos
Desarrollo
Tomaremos las cajas Petri con los medios de cultivo y las abriremos, esterilizaremos las asas bacteriológicas con los mecheros de bunsen, tomaremos una gota de agua destilada con el asa bacteriológica y la colocaremos en el centro del portaobjetos, después toaremos una pequeña muestra de la bacteria que ha crecido en el medio de cultivo y la esparciremos con movimientos de izquierda a derecha, si el frotis queda muy grueso esterilizamos de nuevo el asa bacteriológica y le colocamos de nuevo una gota de agua destilada realizando el mismo procedimiento hasta que el frotis quede finamente delgado, que casi nos se vea más que a tras luz.
Una vez que el frotis ya quedo delgado vamos a fijarlo al portaobjetos es decir lo pasaremos por la flama del mechero sin dejarlo fijamente para evitar que las bacterias se derritan y cambien su morfología. Una vez fijado el frotis queda listo para el proceso de tinción Gram.
Tiempo Actividad
3 min. Colocar equipo de bioseguridad
5 min. Esterilizar las asas bacteriológicas
20 min Realizar frotis
3 min Fijar frotis
Observaciones
Fue un poco más difícil de lo que pensamos, pero aún así lo hicimos bien quedo el frotis delgado y fijado. Listo para la tinción Gram.
Conclusión
Fue la práctica que realizamos en menos tiempo y si nos fue suficiente, ya que terminamos justo a tiempo, si batallamos un poquito en adelgazar el frotis, pero todo resulto bien casi no se veía> A tras luz sí. Una vez listo el frotis y ya fijado los guardamos, los colocamos en papel secante y lo pegamos con tape, se las entregamos al profesor, al igual que los medios de cultivo, que se utilizaron en caso de necesitar hacer un nuevo frotis.
Ficha Bibliográfica
1.- Observaciones personales y grupales
2.- Apuntes de clase
3.- www.monografias.com
Borrador
Práctica No 5
Frotis
“Elaboración de un frotis
El alumno debe realizar un frotis con el producto teñido en las cajas Petri, el cual debe ser fino y delgado para poder realizar un proceso de tinción.
Materiales:
1.- Cajas Petri con medios de cultivo
2.- asa bacteriológica
3.-vaso de precipitados con 25 ml de agua destilada
4.- Mecheros de bunsen
5.-Papel secante
6.- 8 portaobjetos
Desarrollo
Se toma un portaobjetos limpio para poder realizar en su superficie un frotis fresco con el material de la caja Petri “bacteriológico”.
Con el asa bacteriológica se va a realizar un barrido en el portaobjetos en su parte central, esterilizando primero el asa bacteriológica en la flama del mechero, dejándola hasta rojo vivo, una vez fijado el frotis queda listo para el proceso de tinción de Gram.
Objetivo
Realizar un frotis de las colonias bacterianas que han crecido en los medios de cultivo, el cual deberá ser fino y delgado para poder realizar un proceso de tinción y posteriormente observarlo microscópicamente con aceite de inmersión en objetivo 100x.
Introducción
Solicitaremos los materiales necesarios para realizar la práctica, con nuestro equipo de bioseguridad ya colocado. Pediremos principalmente las cajas Petri con los medios de cultivo, tendremos el debido cuidado al utilizar los materiales y los colocaremos dentro de la zona de esterilización en medio de la mesa, y comenzaremos la práctica No 5 llamada “FROTIS”.
Índice
1.-Objetivo
2.-Introducción
3.- Marco Teórico
*Desarrollo
*Notas
*Dibujos
* Bitácora
*Observaciones personales
4.- Conclusión
5.- Fichas Bibliográficas
Marco Teórico
Materiales:
1.-Cajas Petri con medios de cultivo
2.-Asa Bacteriológica
3.-Vaso de precipitados con agua destilada con 25 ml
4.- 2 Mecheros de Bunsen
5.-Papel secante
6.- 8 portaobjetos
Desarrollo
Tomaremos las cajas Petri con los medios de cultivo y las abriremos, esterilizaremos las asas bacteriológicas con los mecheros de bunsen, tomaremos una gota de agua destilada con el asa bacteriológica y la colocaremos en el centro del portaobjetos, después toaremos una pequeña muestra de la bacteria que ha crecido en el medio de cultivo y la esparciremos con movimientos de izquierda a derecha, si el frotis queda muy grueso esterilizamos de nuevo el asa bacteriológica y le colocamos de nuevo una gota de agua destilada realizando el mismo procedimiento hasta que el frotis quede finamente delgado, que casi nos se vea más que a tras luz.
Una vez que el frotis ya quedo delgado vamos a fijarlo al portaobjetos es decir lo pasaremos por la flama del mechero sin dejarlo fijamente para evitar que las bacterias se derritan y cambien su morfología. Una vez fijado el frotis queda listo para el proceso de tinción Gram.
Tiempo Actividad
3 min. Colocar equipo de bioseguridad
5 min. Esterilizar las asas bacteriológicas
20 min Realizar frotis
3 min Fijar frotis
Observaciones
Fue un poco más difícil de lo que pensamos, pero aún así lo hicimos bien quedo el frotis delgado y fijado. Listo para la tinción Gram.
Conclusión
Fue la práctica que realizamos en menos tiempo y si nos fue suficiente, ya que terminamos justo a tiempo, si batallamos un poquito en adelgazar el frotis, pero todo resulto bien casi no se veía> A tras luz sí. Una vez listo el frotis y ya fijado los guardamos, los colocamos en papel secante y lo pegamos con tape, se las entregamos al profesor, al igual que los medios de cultivo, que se utilizaron en caso de necesitar hacer un nuevo frotis.
Ficha Bibliográfica
1.- Observaciones personales y grupales
2.- Apuntes de clase
3.- www.monografias.com
Borrador
Práctica No 5
Frotis
“Elaboración de un frotis
El alumno debe realizar un frotis con el producto teñido en las cajas Petri, el cual debe ser fino y delgado para poder realizar un proceso de tinción.
Materiales:
1.- Cajas Petri con medios de cultivo
2.- asa bacteriológica
3.-vaso de precipitados con 25 ml de agua destilada
4.- Mecheros de bunsen
5.-Papel secante
6.- 8 portaobjetos
Desarrollo
Se toma un portaobjetos limpio para poder realizar en su superficie un frotis fresco con el material de la caja Petri “bacteriológico”.
Con el asa bacteriológica se va a realizar un barrido en el portaobjetos en su parte central, esterilizando primero el asa bacteriológica en la flama del mechero, dejándola hasta rojo vivo, una vez fijado el frotis queda listo para el proceso de tinción de Gram.
Practica # 4 Observacion macroscopica.
Objetivo.
Observar lo que ha crecido en los medios de cultivo y realizar la medida de cada una o la mayoria de las colonias bacteriologicas que han crecido en las cajas Petri.
Desarrollo.
Materiales utilizados:
-Pie de rey
-Medio de cultivo ya sembrados.
-2 Mecheros de Bunsen
-Papel para vestir mesa.
8:00am a 8:10am
Se nos distribuyeron las cajas Petri con los medios de cultivo ya desarrollados.
8:10am a 9:00am
Se le entrego cada caja de Petri al alumno que sembro las diferentes muestras para que cada alumno oliera y describiera cada olor para su registro.
9:00am a 10:00am
Se utilizo el pie de rey para medir las colonias y registrarlo en su informe.Se registro tambien su color y olor.Al final se guardo todo de nuevo y se retiro del laboratorio.
SIEMBRAS OBTENIDAS:
Siembra 1:DX Saborada.Se sembro muestra de pies.Tiene un olor a pie,fetido.Mide 5.5 *4.2 cm.
Siembra 2:EMB.Se sembro muestra de agua contaminada.Tiene olor a fruta podrida.Mide 6.3 cm *6.7 cm.
Siembra 3:Agar verde brillante.Se sembro muestra de agua de frijoles.Huele a frijoles podridos.Mide 6.7 cm * 4cm.
Siembra 4:Salmonella y shigella.Se sembro muestra de orina.Tiene un olor dulce rancio,echado a perder.Mide 5.9 cm * 1.1 cm.
Siembra 5:Eosina y azul de metileno.Se sembro muestra de orina.Tiene un olor a acido penetrante.Mide 4.8 cm *2.7cm.
Siembra 6:Agar MacConkey.Se sembro muestra interdental.Huele una especie de olor bajo,amargo,pero leve.Mide 1 mm * 1mm.
Siembra 7:Eosina y azul de metileno.Se sembro muestra de plasma sanguineo.Tiene un olor a vomito.Un olor tenue.Mide 1 cm * 1cm.
Siembra 8:Eosina y azul de metileno.Se sembro muestra de agua fresca.Un olor a vomito,a podrido.Mide 0.5 cm * 0.5cm.
Conclusión.
Se aprendio como y que tanto pueden crecer siembras en distintos tipos de medio de cultivo.Se aprendio que tipo de olor y que color obtenian.
Observar lo que ha crecido en los medios de cultivo y realizar la medida de cada una o la mayoria de las colonias bacteriologicas que han crecido en las cajas Petri.
Desarrollo.
Materiales utilizados:
-Pie de rey
-Medio de cultivo ya sembrados.
-2 Mecheros de Bunsen
-Papel para vestir mesa.
8:00am a 8:10am
Se nos distribuyeron las cajas Petri con los medios de cultivo ya desarrollados.
8:10am a 9:00am
Se le entrego cada caja de Petri al alumno que sembro las diferentes muestras para que cada alumno oliera y describiera cada olor para su registro.
9:00am a 10:00am
Se utilizo el pie de rey para medir las colonias y registrarlo en su informe.Se registro tambien su color y olor.Al final se guardo todo de nuevo y se retiro del laboratorio.
SIEMBRAS OBTENIDAS:
Siembra 1:DX Saborada.Se sembro muestra de pies.Tiene un olor a pie,fetido.Mide 5.5 *4.2 cm.
Siembra 2:EMB.Se sembro muestra de agua contaminada.Tiene olor a fruta podrida.Mide 6.3 cm *6.7 cm.
Siembra 3:Agar verde brillante.Se sembro muestra de agua de frijoles.Huele a frijoles podridos.Mide 6.7 cm * 4cm.
Siembra 4:Salmonella y shigella.Se sembro muestra de orina.Tiene un olor dulce rancio,echado a perder.Mide 5.9 cm * 1.1 cm.
Siembra 5:Eosina y azul de metileno.Se sembro muestra de orina.Tiene un olor a acido penetrante.Mide 4.8 cm *2.7cm.
Siembra 6:Agar MacConkey.Se sembro muestra interdental.Huele una especie de olor bajo,amargo,pero leve.Mide 1 mm * 1mm.
Siembra 7:Eosina y azul de metileno.Se sembro muestra de plasma sanguineo.Tiene un olor a vomito.Un olor tenue.Mide 1 cm * 1cm.
Siembra 8:Eosina y azul de metileno.Se sembro muestra de agua fresca.Un olor a vomito,a podrido.Mide 0.5 cm * 0.5cm.
Conclusión.
Se aprendio como y que tanto pueden crecer siembras en distintos tipos de medio de cultivo.Se aprendio que tipo de olor y que color obtenian.
Practica # 3 Siembra de medios de cultivo. .
Objetivo.
El objetivo de esta practica fue para sembrar diferentes tipos de muestras,entre ellas orina,interdental,plasma sanguineo,etcetera.
Desarrollo.
10:00 AM a 10:10 AM
Se entro al laboratorio,se coloco el equipo de bioseguridad y se dieron indicaciones.
10:10 AM a 10:40 AM
Con ayuda del profesor,se realizo la extracción de sangre de 1 integrante de cada mesa para obtener una muestra de sangre fresca.
10:40 AM a 11:00 AM
Mientras la sangre coagulaba y se separaban sus componenetes,se nos entrego las cajas Petri con diferentes tipos de medio de cultivo.
11:00 AM a 12:00 PM
En este lapso de tiempo,se realizo la siembra de muestras de diferentes tipos,cada una hecha por cada miembro de la mesa.En la siembra se utilizaron muestras interdigitales,interdentales,agua fresca,suero sanguineo,agua de frijoles,agua sucia estancada y orina.Al ultimo se etiquetaron las cajas y se introducieron a la estufa de incubacion para su crecimiento.
Los tipos de estrias que se utilizaron para sembrar los diferentes tipos de muestras fueron:
Por dispersion,estrias,MacConkey y por agotamiento.
Conclusión.
En esta etapa de lo que es toda la practica,se aprendio a sembrar lo que son las muestras de cultivo y asi se aprende los diferentes tipos de siembra y esperar el crecimiento de las bacterias.
El objetivo de esta practica fue para sembrar diferentes tipos de muestras,entre ellas orina,interdental,plasma sanguineo,etcetera.
Desarrollo.
10:00 AM a 10:10 AM
Se entro al laboratorio,se coloco el equipo de bioseguridad y se dieron indicaciones.
10:10 AM a 10:40 AM
Con ayuda del profesor,se realizo la extracción de sangre de 1 integrante de cada mesa para obtener una muestra de sangre fresca.
10:40 AM a 11:00 AM
Mientras la sangre coagulaba y se separaban sus componenetes,se nos entrego las cajas Petri con diferentes tipos de medio de cultivo.
11:00 AM a 12:00 PM
En este lapso de tiempo,se realizo la siembra de muestras de diferentes tipos,cada una hecha por cada miembro de la mesa.En la siembra se utilizaron muestras interdigitales,interdentales,agua fresca,suero sanguineo,agua de frijoles,agua sucia estancada y orina.Al ultimo se etiquetaron las cajas y se introducieron a la estufa de incubacion para su crecimiento.
Los tipos de estrias que se utilizaron para sembrar los diferentes tipos de muestras fueron:
Por dispersion,estrias,MacConkey y por agotamiento.
Conclusión.
En esta etapa de lo que es toda la practica,se aprendio a sembrar lo que son las muestras de cultivo y asi se aprende los diferentes tipos de siembra y esperar el crecimiento de las bacterias.
Practica # 1 y 2 Medio de cultivo y tecnica de esterilizacion.
Objetivo.
Realizar el medio de cultivo de manera adecuada para poder cultivar colonias de bacterias para su posterior observación.
Introducción.
En esta practica se realizara la preparación del medio de cultivo disponible y lo que conlleva su preparación incluyendo la utlizacion de la tecnica de esterilización con el autoclave.
Desarrollo.
El material utilizado en esta practica fue:
-Matraz Erlenmeyer 250 ml
-Varilla de cristal
-Balanza granataria
-Papel secante
-Vaso de precipitado de 500 ml
-Vaso de precipitado de 250 ml
-Vidrio de reloj
-Tape
-Medio de cultivo en polvo
-Vaso de precipitado de 50 ml
-9 Cajas Petri
-Espatula
-Embudo de cristal
-Torundas de algodón
-Agua destilada
-2 Mecheros de Bunsen
8:00 AM
Se llego al laboratorio,portando el equipo de bioseguridad.Al entrar se espero la orden y se comenzaron a habilitar las llaves de gas LP y las autoclaves para la esterilización.
Se observaron las instrucciones del medio de cultivo mientras se recojian los materiales a utilizar y se cubria la mesa con papel para evitar manchar o contaminar.
8:15 AM
Se comenzo la preparación del medio de cultivo combinandolo con agua destilada para después calentarlo y esterilizarlo.Mientras tanto el autoclave se preparaba.
8:50 AM
El medio de cultivo estaba siendo calentado para posteriormente dejarlo reposar,tomar nota e introducirlo al autoclave.
9:35 AM
Se introdujo el medio de cultivo al autoclave,por un tiempo indeterminado,cuidando que el autoclave no pasara ni la temperatura ni la presion indicada.
10:00 AM
Se deposito en las cajas Petri con cuidado de no derramar ni de contaminar los medios de cultivo utilizando el campo de esterilización hechos por los mecheros de Bunsen.Despues se limpio todo,se etiquetaron los medios de cultivo y se retiro del laboratorio al alumnado.
Conclusión.
En esta practica estamos aprendiendo el primer paso de la tecnica para realizar medios de cultivo,ademas de utilizar el autoclave para la esterilización.
Realizar el medio de cultivo de manera adecuada para poder cultivar colonias de bacterias para su posterior observación.
Introducción.
En esta practica se realizara la preparación del medio de cultivo disponible y lo que conlleva su preparación incluyendo la utlizacion de la tecnica de esterilización con el autoclave.
Desarrollo.
El material utilizado en esta practica fue:
-Matraz Erlenmeyer 250 ml
-Varilla de cristal
-Balanza granataria
-Papel secante
-Vaso de precipitado de 500 ml
-Vaso de precipitado de 250 ml
-Vidrio de reloj
-Tape
-Medio de cultivo en polvo
-Vaso de precipitado de 50 ml
-9 Cajas Petri
-Espatula
-Embudo de cristal
-Torundas de algodón
-Agua destilada
-2 Mecheros de Bunsen
8:00 AM
Se llego al laboratorio,portando el equipo de bioseguridad.Al entrar se espero la orden y se comenzaron a habilitar las llaves de gas LP y las autoclaves para la esterilización.
Se observaron las instrucciones del medio de cultivo mientras se recojian los materiales a utilizar y se cubria la mesa con papel para evitar manchar o contaminar.
8:15 AM
Se comenzo la preparación del medio de cultivo combinandolo con agua destilada para después calentarlo y esterilizarlo.Mientras tanto el autoclave se preparaba.
8:50 AM
El medio de cultivo estaba siendo calentado para posteriormente dejarlo reposar,tomar nota e introducirlo al autoclave.
9:35 AM
Se introdujo el medio de cultivo al autoclave,por un tiempo indeterminado,cuidando que el autoclave no pasara ni la temperatura ni la presion indicada.
10:00 AM
Se deposito en las cajas Petri con cuidado de no derramar ni de contaminar los medios de cultivo utilizando el campo de esterilización hechos por los mecheros de Bunsen.Despues se limpio todo,se etiquetaron los medios de cultivo y se retiro del laboratorio al alumnado.
Conclusión.
En esta practica estamos aprendiendo el primer paso de la tecnica para realizar medios de cultivo,ademas de utilizar el autoclave para la esterilización.
tinciones
Tinciones
Tincion:Teñido o coloracion artificial de tejidos,celulas o microorganismos para facilitar su estudio microscopico.
Clasificacion.
Tincion directa:El colorante interacciona directamente con el sustrato.
Tincion indirecta:Se hace interaccionar en primer lugar a una sustancia quimica denominada mordiente con el sustrato la cual permite la posterior interaccion del colorante.
Tincion por azul de metileno:El azul de metileno,cuyo nombre cientifico es cloruro de metilionina,es un colorante que se usa para dar color en las tinciones para la observación en el microscopio.
Tincion Gram:La tincion de Gram o coloracion de Gram es un tipo de tincion diferencial empleado en microbiologia para la visualizacion de las bacterias gramnegativas.
Tincion Ziehl Neelsen:La tincion de Ziehl Neelsen es una tecnica de tincion diferencial rapida y economica para la identificación de microorganismos patogenos.
Tincion:Teñido o coloracion artificial de tejidos,celulas o microorganismos para facilitar su estudio microscopico.
Clasificacion.
Tincion directa:El colorante interacciona directamente con el sustrato.
Tincion indirecta:Se hace interaccionar en primer lugar a una sustancia quimica denominada mordiente con el sustrato la cual permite la posterior interaccion del colorante.
Tincion por azul de metileno:El azul de metileno,cuyo nombre cientifico es cloruro de metilionina,es un colorante que se usa para dar color en las tinciones para la observación en el microscopio.
Tincion Gram:La tincion de Gram o coloracion de Gram es un tipo de tincion diferencial empleado en microbiologia para la visualizacion de las bacterias gramnegativas.
Tincion Ziehl Neelsen:La tincion de Ziehl Neelsen es una tecnica de tincion diferencial rapida y economica para la identificación de microorganismos patogenos.
sábado, 30 de mayo de 2009
inestigacion No. 5
Salmonelosis:
Los signos y síntomas de una infección por salmonela aparecen generalmente 12 a 72 horas después de que los microbios entran en su cuerpo. Usted puede tener cualquiera de lo siguiente:• Dolor tipo cólico en el abdomen (estómago).
•Diarrea (evacuaciones flojas) que pueden tener
sangre.
•Fiebre o dolor de cabeza.
•Náusea (malestar estomacal) o vomito (devolver).
•Pérdida de peso o deshidratación (perder demasiado líquido)
Tifoidea:
La fiebre tifoidea esta caracterizada por fiebre alta constante (40º), sudoración profusa, gastroenteritis y diarrea. Menos comúnmente puede aparecer un sarpullido de manchas aplanadas de color rosáceo. Tradicionalmente se divide en cuatro fases, durando cada una de ellas una semana aproximadamente.Primera semana: Durante esta fase sube lentamente la temperatura con una bradicardia relativa, malestar general, dolor de cabeza y tos. Se ha observado Epistaxis en una cuarta parte de los casos. Hay leucopenia con eosinopenia y linfocitosis relativa.Segunda semana: Durante esta fase se produce la postración. Llegando la fiebre al culmen de los 40º C. Hay bradicardia con un pulso dicrótico. El delirio es frecuente (este delirio le da a la Fiebre Tifoidea el nombre de fiebre nerviosa). En un tercio de los pacientes se han observado puntos rojos en la parte inferior del pecho y abdomen. Hay respiración agitada. El abdomen esta distendido y dolorido en cuadrante derecho inferior. La diarrea puede también ocurrir en esta fase (6 - 8 deposiciones por día), de apariencia verde y olor característico con apariencia de puré de guisantes. No obstante el estreñimiento también es frecuente. El Bazo e hígado están inflamados con un aumento del nivel de transaminasas.Tercera semana: En esta semana si la fiebre tifoidea no se trata, las complicaciones son frecuentes: Hemorragias Intestinales debidas a la congestión de las Placas de Peyer (serias pero no necesariamente mortales); Perforación intestinal en el Íleon que puede dar lugar a peritonitis abscesos que pueden derivar en encefalitis, colecistitis, y endocarditis. La fiebre es alta.Finales de Tercera semana/Principios de la cuarta: La temperatura corporal se va restableciendo, pero el debilibitamiento aun persiste
Brucelosis:
Sintomatología inicial es fiebre, cefalea, dolor vertebral con afectación de las articulaciones sacroilíacas y adenopatías (inflamación de los ganglios) en el 50% de los afectados. En casos más graves puede producir endocarditis y neumonía. La fiebre suele subir durante la noche y disminuir durante el día, con períodos de oscilación (de ahí que se dé el nombre de fiebre ondulante a la enfermedad).
Los signos y síntomas de una infección por salmonela aparecen generalmente 12 a 72 horas después de que los microbios entran en su cuerpo. Usted puede tener cualquiera de lo siguiente:• Dolor tipo cólico en el abdomen (estómago).
•Diarrea (evacuaciones flojas) que pueden tener
sangre.
•Fiebre o dolor de cabeza.
•Náusea (malestar estomacal) o vomito (devolver).
•Pérdida de peso o deshidratación (perder demasiado líquido)
Tifoidea:
La fiebre tifoidea esta caracterizada por fiebre alta constante (40º), sudoración profusa, gastroenteritis y diarrea. Menos comúnmente puede aparecer un sarpullido de manchas aplanadas de color rosáceo. Tradicionalmente se divide en cuatro fases, durando cada una de ellas una semana aproximadamente.Primera semana: Durante esta fase sube lentamente la temperatura con una bradicardia relativa, malestar general, dolor de cabeza y tos. Se ha observado Epistaxis en una cuarta parte de los casos. Hay leucopenia con eosinopenia y linfocitosis relativa.Segunda semana: Durante esta fase se produce la postración. Llegando la fiebre al culmen de los 40º C. Hay bradicardia con un pulso dicrótico. El delirio es frecuente (este delirio le da a la Fiebre Tifoidea el nombre de fiebre nerviosa). En un tercio de los pacientes se han observado puntos rojos en la parte inferior del pecho y abdomen. Hay respiración agitada. El abdomen esta distendido y dolorido en cuadrante derecho inferior. La diarrea puede también ocurrir en esta fase (6 - 8 deposiciones por día), de apariencia verde y olor característico con apariencia de puré de guisantes. No obstante el estreñimiento también es frecuente. El Bazo e hígado están inflamados con un aumento del nivel de transaminasas.Tercera semana: En esta semana si la fiebre tifoidea no se trata, las complicaciones son frecuentes: Hemorragias Intestinales debidas a la congestión de las Placas de Peyer (serias pero no necesariamente mortales); Perforación intestinal en el Íleon que puede dar lugar a peritonitis abscesos que pueden derivar en encefalitis, colecistitis, y endocarditis. La fiebre es alta.Finales de Tercera semana/Principios de la cuarta: La temperatura corporal se va restableciendo, pero el debilibitamiento aun persiste
Brucelosis:
Sintomatología inicial es fiebre, cefalea, dolor vertebral con afectación de las articulaciones sacroilíacas y adenopatías (inflamación de los ganglios) en el 50% de los afectados. En casos más graves puede producir endocarditis y neumonía. La fiebre suele subir durante la noche y disminuir durante el día, con períodos de oscilación (de ahí que se dé el nombre de fiebre ondulante a la enfermedad).
practica 8
meterial practica 8 !!
AglutinaciónMateriales
1.-Lámina de cristal para reacciones febriles
2.-Tubo de ensaye con tapón rojo estéril
3.-Palillos de madera 2 o 3 por cada uno
4.-Torundas de algodón
5.- Centrifuga
6.- Microscopio
7.-Pipeta Pasteur con lóbulo
8.- Papel secante
9.- Papel para mesa de laboratorio
10.- Torniquete
11.-GradillasReactivosFebriclinHO AB Bruc. Proteus 0x19º º
º º“Paciente” “sangre fresca”
Hoja de solicitud de examen Solicitud para examen de laboratorioIndicaciones del laboratorio para el paciente
Folio del registro“Inmunología” (portada del libro) con 3 bacterias:Salmonella, Brucella y ProteusAnalítica
1.- Técnica de extracción de sangre(Venopunción)
2.- separación del paquete sanguíneo y plasma
3.-Punteo de plasma en placa de cristal
4.-Mezclar plasma con reactivo de Febriclin para observar la reacción de aglutinación
5.-Observar macroscópicamente la laminilla a tras luz
6.-observar microscópicamente el proceso de aglutinación en objetivo 10x y 40x
7.-Reportamos en hoja de laboratorio:
Nombre del laboratorio, dirección, datos del paciente: nombre, edad, peso
Para Dr.
Tífico H= +- (positivo o negativo)
Tífico O= +-
Paratífico A=+-B
Brucella abortus= +-
Proteus 0x19 =+-
AglutinaciónMateriales
1.-Lámina de cristal para reacciones febriles
2.-Tubo de ensaye con tapón rojo estéril
3.-Palillos de madera 2 o 3 por cada uno
4.-Torundas de algodón
5.- Centrifuga
6.- Microscopio
7.-Pipeta Pasteur con lóbulo
8.- Papel secante
9.- Papel para mesa de laboratorio
10.- Torniquete
11.-GradillasReactivosFebriclinHO AB Bruc. Proteus 0x19º º
º º“Paciente” “sangre fresca”
Hoja de solicitud de examen Solicitud para examen de laboratorioIndicaciones del laboratorio para el paciente
Folio del registro“Inmunología” (portada del libro) con 3 bacterias:Salmonella, Brucella y ProteusAnalítica
1.- Técnica de extracción de sangre(Venopunción)
2.- separación del paquete sanguíneo y plasma
3.-Punteo de plasma en placa de cristal
4.-Mezclar plasma con reactivo de Febriclin para observar la reacción de aglutinación
5.-Observar macroscópicamente la laminilla a tras luz
6.-observar microscópicamente el proceso de aglutinación en objetivo 10x y 40x
7.-Reportamos en hoja de laboratorio:
Nombre del laboratorio, dirección, datos del paciente: nombre, edad, peso
Para Dr.
Tífico H= +- (positivo o negativo)
Tífico O= +-
Paratífico A=+-B
Brucella abortus= +-
Proteus 0x19 =+-
practica 9
material practica 9
Pre analíticaMateriales:
1.-Tubo de ensaye con tapón morado
2.-Placa de porcelana excavada
3.-Wiltrobe
4.-Vasal
5.-Centrifuga
6.-Pipeta Pasteur y lóbulo
7.-Palillos de madera
8.- Torundas de algodón alcoholizadas
9.-microcentrifuga
10.-papel secante y para mesa de laboratorio
11.- GradillasReactivos:
1.- Tipificadores A, b, d
Tipo sanguíneo
Prueba de aglutinación en sangre (objetivo)
Pre analíticaMateriales:
1.-Tubo de ensaye con tapón morado
2.-Placa de porcelana excavada
3.-Wiltrobe
4.-Vasal
5.-Centrifuga
6.-Pipeta Pasteur y lóbulo
7.-Palillos de madera
8.- Torundas de algodón alcoholizadas
9.-microcentrifuga
10.-papel secante y para mesa de laboratorio
11.- GradillasReactivos:
1.- Tipificadores A, b, d
Tipo sanguíneo
Prueba de aglutinación en sangre (objetivo)
frotis
Un frotis de sangre es un proceso científico que consiste en el extendido de una gota de sangre en la superficie de un portaobjetos o de un cubreobjetos, con el fin de analizarla posteriormente.
Es más adecuado emplear sangre que aun no ha estado en contacto con el anticoagulante, pues este podría alterar los resultados (algunos anticoagulantes tienden a deformar las células de la sangre).
Su realización es de vital importancia para obtener una orientación de:
1. La valoración de la estimulación eritropoyetica.
2. Las anomalías en la maduración nuclear y citoplásmica de las células hemáticas.
3. Los trastornos en la arquitectura de las células al formarse en la médula osea.
4. Las alteraciones singulares en la forma de las células, que son una identificación especifica de algunas enfermedades.
5. Algún indicador de los efectos nocivos de la quimioterapia y de la radioterapia.
6. La diferenciación y recuento de los elementos celulares de la sangre.
La fidelidad de la información obtenida de ellos, depende en gran parte de la calidad de las extensiones. Estas no deben ser demasiado gruesas porque las células se amontonarían y no podrían ser reconocidas, ni diferenciarse, ni demasiado delgadas porque las células se deformarían, distorsionarían y destruirían. Por eso los frotis de sangre deben ser bien nivelados y para obtener buenos resultados es necesario que:
1. Tanto portaobjetos como cubreobjetos deben estar bien limpios y desengrasados (prefentemente nuevos).
2. La gota de sangre usada para la preparación de el frotis no debe ser muy grande ni pequeña, de preferencia de el tamaño de la cabeza de un alfiler (entre 2 y 3 mm), obtenida por punción capilar.
3. La sangre no haya estado en contacto con anticoagulante, pues podría deformarse la morfología celular si pasase esto.
4. La lectura de las extensiones se hará en las zonas donde los eritrocitos "casi se tocan".
Es más adecuado emplear sangre que aun no ha estado en contacto con el anticoagulante, pues este podría alterar los resultados (algunos anticoagulantes tienden a deformar las células de la sangre).
Su realización es de vital importancia para obtener una orientación de:
1. La valoración de la estimulación eritropoyetica.
2. Las anomalías en la maduración nuclear y citoplásmica de las células hemáticas.
3. Los trastornos en la arquitectura de las células al formarse en la médula osea.
4. Las alteraciones singulares en la forma de las células, que son una identificación especifica de algunas enfermedades.
5. Algún indicador de los efectos nocivos de la quimioterapia y de la radioterapia.
6. La diferenciación y recuento de los elementos celulares de la sangre.
La fidelidad de la información obtenida de ellos, depende en gran parte de la calidad de las extensiones. Estas no deben ser demasiado gruesas porque las células se amontonarían y no podrían ser reconocidas, ni diferenciarse, ni demasiado delgadas porque las células se deformarían, distorsionarían y destruirían. Por eso los frotis de sangre deben ser bien nivelados y para obtener buenos resultados es necesario que:
1. Tanto portaobjetos como cubreobjetos deben estar bien limpios y desengrasados (prefentemente nuevos).
2. La gota de sangre usada para la preparación de el frotis no debe ser muy grande ni pequeña, de preferencia de el tamaño de la cabeza de un alfiler (entre 2 y 3 mm), obtenida por punción capilar.
3. La sangre no haya estado en contacto con anticoagulante, pues podría deformarse la morfología celular si pasase esto.
4. La lectura de las extensiones se hará en las zonas donde los eritrocitos "casi se tocan".
bacilos
Los bacilos son bacterias que tienen forma de bastón, cuando se observan al microscopio.
Los bacilos se suelen dividir en:
Bacilos Gram. Positivos: En microbiología, se denominan bacterias Gram. positivas a aquellas bacterias que se tiñen de azul oscuro o violeta por la tinción de Gram.: de aquí el nombre de "Gram.-positivas" o también "grampositivas".[1] Esta característica está íntimamente ligada a la estructura de la envoltura celular por lo que refleja un tipo natural de organización bacteriana. Son uno de los principales grupos de bacterias, y cuando se tratan como taxón se utiliza también el nombre de Posibacteria.[2] Las restantes son las bacterias Gram negativas.
Bacilos Gram negativos: En microbiología, se denominan bacterias Gram. negativas a aquellas bacterias que no se tiñen de azul oscuro o violeta por la tinción de Gram.: de ahí el nombre de "Gram.-negativas" o también "gramnegativas".[1] Esta característica está íntimamente ligada a la estructura de la envoltura celular, por lo que refleja un tipo natural de organización bacteriana. Son uno de los principales grupos de bacterias y cuando se tratan como taxón se utiliza también el nombre de Negibacteria.[2] Las restantes son las bacterias Gram positivas.
Los bacilos se suelen dividir en:
Bacilos Gram. Positivos: En microbiología, se denominan bacterias Gram. positivas a aquellas bacterias que se tiñen de azul oscuro o violeta por la tinción de Gram.: de aquí el nombre de "Gram.-positivas" o también "grampositivas".[1] Esta característica está íntimamente ligada a la estructura de la envoltura celular por lo que refleja un tipo natural de organización bacteriana. Son uno de los principales grupos de bacterias, y cuando se tratan como taxón se utiliza también el nombre de Posibacteria.[2] Las restantes son las bacterias Gram negativas.
Bacilos Gram negativos: En microbiología, se denominan bacterias Gram. negativas a aquellas bacterias que no se tiñen de azul oscuro o violeta por la tinción de Gram.: de ahí el nombre de "Gram.-negativas" o también "gramnegativas".[1] Esta característica está íntimamente ligada a la estructura de la envoltura celular, por lo que refleja un tipo natural de organización bacteriana. Son uno de los principales grupos de bacterias y cuando se tratan como taxón se utiliza también el nombre de Negibacteria.[2] Las restantes son las bacterias Gram positivas.
cocos
Coco, tipo morfológico de bacteria. Tiene forma más o menos esférica (ninguna de sus dimensiones predomina claramente sobre las otras).
- Diplococo: estos cocos se dividen en un sólo plano formando parejas, y dan la impresión de un grano de café, entre éstos podemos citar a los meningococos y gonococos.
Algunos ocasionan enfermedades a los humanos (Ej.: neumococo y estafilococo) también es causante de enfermedades como el de la meningitis, otros resultan inocuos o incluso beneficiosos.
Los cocos se dividen en:
- Diplococos: Son pares.
- Estreptococos: En cadena.
- Estafilococos: En racimo.
- Tétradas: En número de 4.
- Sarcinas: En paquetes.
domingo, 17 de mayo de 2009
paramecio
Los paramecium
Proteus: es un genero de bacterias gramnegativas, que incluye patógenos responsables de muchas infecciones del tracto urinario. Las especies de Proteus normalmente no fermentan lactosa por razón de tener una β galactosidasa, pero algunas se han mostrado capaces de hacerlo en el test TSI (Triple Sugar Iron). Son oxidasa-negativas y ureasa-positivas. Algunas especies son mótiles. Tienden a ser organismos pleomórficos, no esporulados ni capsulados y son productoras de fenilalanina desaminasa. Con la excepción de P. mirabilis, todos los Proteus reaccionan negativos con la prueba del indol .
Brucella abortus: es una bacteria Gram negativa con un lipopolisacárido (LPS) fuertemente inmunodominante, el que junto con la capacidad de sobrevivir en el interior de células fagocíticas constituyen sus principales factores de virulencia. La infección en humanos conduce a una enfermedad con tendencia a la cronicidad, con fiebre y malestar recurrentes que deterioran su calidad de vida y que además puede presentar complicaciones como artritis, meningitis, entre otras.
En el ganado bovino la bacteria se ubica en la placenta y órganos reproductores por su afinidad por el eritritol. La respuesta inmune frente a B. abortus, patógeno intracelular facultativo, depende principalmente de la activación de la inmunidad mediada por células, con la participación de células T CD4+ de tipo Th1, que secretan interferón gama (INF-γ), citoquina que estimula tanto la actividad bactericida de macrófagos como la actividad citotóxica de los linfocitos T CD8+. Estos últimos son capaces entonces de destruir células infectadas con Brucella.
Son protozoos ciliados con forma de suela se zapato, habituales en aguas dulces estancadas con abundante materia orgánica como charcos y estanques.
El tamaño ordinario de todas las especies de paramecios es de apenas 0’05mm.
Como muchos otros microorganismos, los paramecios se reproducen asexualmente por fisión binaria, se alimentan de bacterias y otros microorganismos microscópicos y para atraparlos utilizan una boca en forma de ranura.
-Características de los siguientes microorganismos pertenecientes al grupo de las enterobacterias:
Escherichia Coli: Organismo procarionte, que trata de un bacteria que se encuentra generalmente en los intestinos animales y por ende en las aguas negras. Principal organismos anaerobio facultativo del sistema digestivo.
La bacteria no adquiere elementos genéticos que codifican factores virulentos. La Escherichia coli O157:H7 es una de cientos de cepas de la E. coli. Aunque la mayoría de las cepas son inocuas y viven en los intestinos de los seres humanos y animales saludables, esta cepa produce una potente toxina y puede ocasionar enfermedades graves como el Síndrome urémico hemolitico.
El tamaño ordinario de todas las especies de paramecios es de apenas 0’05mm.
Como muchos otros microorganismos, los paramecios se reproducen asexualmente por fisión binaria, se alimentan de bacterias y otros microorganismos microscópicos y para atraparlos utilizan una boca en forma de ranura.
-Características de los siguientes microorganismos pertenecientes al grupo de las enterobacterias:
Escherichia Coli: Organismo procarionte, que trata de un bacteria que se encuentra generalmente en los intestinos animales y por ende en las aguas negras. Principal organismos anaerobio facultativo del sistema digestivo.
La bacteria no adquiere elementos genéticos que codifican factores virulentos. La Escherichia coli O157:H7 es una de cientos de cepas de la E. coli. Aunque la mayoría de las cepas son inocuas y viven en los intestinos de los seres humanos y animales saludables, esta cepa produce una potente toxina y puede ocasionar enfermedades graves como el Síndrome urémico hemolitico.
Salmonella: Es un género de bacteria que pertenece a la familia Enterobacteriaceae, formado por bacilos gramnegativos, anaerobios facultativos, con flagelos perítricos y que no desarrollan cápsula ni esporas. Son bacterias móviles que producen sulfuro de hidrógeno (H2S). Fermentan glucosa por poseer una enzima especializada, pero no lactosa, y no producen ureasa.
Es un agente zoonótico de distribución universal. Se transmite por contacto directo o contaminación cruzada durante la manipulación, en el procesado de alimentos o en el hogar, también por vía sexual.
Algunas salmonellas son comunes en la piel de tortugas y de muchos reptiles, lo cual puede ser importante cuando se manipulan a la vez este tipo de mascotas y alimentos.
Proteus: es un genero de bacterias gramnegativas, que incluye patógenos responsables de muchas infecciones del tracto urinario. Las especies de Proteus normalmente no fermentan lactosa por razón de tener una β galactosidasa, pero algunas se han mostrado capaces de hacerlo en el test TSI (Triple Sugar Iron). Son oxidasa-negativas y ureasa-positivas. Algunas especies son mótiles. Tienden a ser organismos pleomórficos, no esporulados ni capsulados y son productoras de fenilalanina desaminasa. Con la excepción de P. mirabilis, todos los Proteus reaccionan negativos con la prueba del indol .Brucella abortus: es una bacteria Gram negativa con un lipopolisacárido (LPS) fuertemente inmunodominante, el que junto con la capacidad de sobrevivir en el interior de células fagocíticas constituyen sus principales factores de virulencia. La infección en humanos conduce a una enfermedad con tendencia a la cronicidad, con fiebre y malestar recurrentes que deterioran su calidad de vida y que además puede presentar complicaciones como artritis, meningitis, entre otras.En el ganado bovino la bacteria se ubica en la placenta y órganos reproductores por su afinidad por el eritritol. La respuesta inmune frente a B. abortus, patógeno intracelular facultativo, depende principalmente de la activación de la inmunidad mediada por células, con la participación de células T CD4+ de tipo Th1, que secretan interferón gama (INF-γ), citoquina que estimula tanto la actividad bactericida de macrófagos como la actividad citotóxica de los linfocitos T CD8+. Estos últimos son capaces entonces de destruir células infectadas con Brucella.
sábado, 9 de mayo de 2009
BACTERIAS ACTIVAS DENTRO DE MEDIO DE CULTIVO HABILITADO
Cuando se desea cultivar bacterias, es necesario tomar en cuenta los componentes nutritivos, sales, humedad y las condiciones físicas como lo son el PH, la luz y temperatura. Una bacteria puede alterar el PH del medio de cultivo como resultado de la degradación de sustancias producidas por la propia bacteria.
Por otro lado las bacterias en su conjunto presentan una respuesta variable al oxígeno libre clasificandose en cnco grupos:
* Aerobicos...Bacterias que crecen en presencia de oxígen libre.
* Anaerobicos...Bacterias que crecen en ausencia de oxígeno libre.
* Anaerobios...Facultativas, bacterias que crecen en presencia como en ausencia de oxígeno libre.
* Aerotolerantes...Bacterias que pueden tolerar el oxígeno y crecen en su presencia aun cuando no lo utilizan.
* Micro aerofilas...Bacterias que crecen en presencia de pequeñas cantidades de O libre.
Por otro lado las bacterias en su conjunto presentan una respuesta variable al oxígeno libre clasificandose en cnco grupos:
* Aerobicos...Bacterias que crecen en presencia de oxígen libre.
* Anaerobicos...Bacterias que crecen en ausencia de oxígeno libre.
* Anaerobios...Facultativas, bacterias que crecen en presencia como en ausencia de oxígeno libre.
* Aerotolerantes...Bacterias que pueden tolerar el oxígeno y crecen en su presencia aun cuando no lo utilizan.
* Micro aerofilas...Bacterias que crecen en presencia de pequeñas cantidades de O libre.
moleculas inorganicas
Se denomina compuesto inorgánico a todos aquellos compuestos que están formados por distintos elementos pero en los que su componente principal no siempre es el carbono, siendo el agua el más importante.Entre los compuestos inorgánicos más importantes de los seres vivos tenemos el agua y las sales minerales que abundan en el suelo, y el dióxido de carbono, el cual exhalamos nosotros cuando respiramos.-Moléculas inorgánicas: Agua, sales minerales y gases.-Ejemplos de compuestos inorgánicos:-Cloruro de sodio- Agua- Amoniaco- Dióxido de Carbono-El cloruro: Es necesario para la elaboracion del acido clorhídrico del tejido gástrico.-Sodio: Interviene en la regulación del balanceo hídrico favoreciendo la retención de agua.-Potasio: Actúa en el balanceo hídrico favoreciendo la eliminación de agua.-Yodo: Necesario para que la glándula tiroides elabore la secreción hormonal que regula el metabolismo.-Hierro: Imprensindible para la formación de la hemorragia de los glóbulos rojos.-Calcio y fósforo: Constituyen la parte inorgánica de los huesos-CO2: Fundamental para el proceso de la fotosíntesis.
practica de pipeteo
Objetivo
En esta práctica es la número tres y se realizará con el fin de aprender las pipetas graduadas volumétricas que ya conocemos, a manejarlas debidamente.
La medición de líquidos se realizará tomando desde 1ml hasta 5 ml. También utilizaremos una pipeta automática que mide en microlitros. Se tomará en la probeta para verificar que esta correcta la medida. Se compararan las gotas de todas las pipetas sobre una caja de Petri y todos los integrantes de la mesa deberán realizar el pipeteo.
Introducción
La práctica de pipeteo consistirá, en que tomemos todas las pipetas graduadas volumétricas y las llevemos a la mesa de trabajo, las tomaremos de una por una y uno por uno cada integrante del equipo deberá de realizar el pipeteo desde 1 ml hasta 5 ml, deberemos manejarlas con mucho cuidado.
La pipeta Pasteur no la manejaremos igual que las otras ya que esta, cuenta con un lóbulo de extracción, que es el que utilizaremos para succionar el agua. La pipeta automática se maneja con microlitros, mientras que el resto de las pipetas debes succionar el agua con la boca.
Depositaremos el agua en la probeta y checaremos que coincidan las medidas, así nos daremos cuenta si lo hicimos bien.
INDICE
1. Objetivo
2. Introducción
3. Marco teórico
*Dibujos
*Notas
*Bitácora
* Observaciones personales
4. Conclusión
5. Ficha Bibliográfica
Marco TEORICO
Materiales:
Probeta graduada 25 ml
Probeta graduada 100 ml
Matraz Erlenmeyer 250 ml
Pipeta Pasteur y lóbulo de extracción
Pipeta graduada 10 ml
Pipeta automática
Pipeta volumétrica 5 ml
Pipeta volumétrica 1 ml
Procedimiento:
Cada uno de los integrantes realizará la misma actividad, con las 5 pipetas entregadas y colocará la muestra de líquido en la probeta, se pipetearán desde 1 ml hasta 5 ml. Una vez hecho eso se colocara una gota de cada pipeta en una caja de Petri y se compararán sus tamaños.
Notas:
Pipeta Pasteur se aprieta se aprieta el lóbulo para succionar el agua contenida en el matraz Erlenmeyer hacia la probeta, al utilizarla 5 veces se llego a los 3 ml.
Pipeta volumétrica 1 ml
Se succiona el agua con la boca, después lo colocamos en la probeta graduada y lo comprobamos que aspiramos realmente 1 ml de agua.
Pipeta Volumétrica (5 ml)
Se succiona con la boca, sostenemos con el menisco, soltamos y ponemos el agua en la probeta comprobando que si son 5 ml exactos.
Pipeta graduada 10 ml
Se aspira el agua, de igual modo sostenemos con el menisco hasta el 10, luego colocamos el líquido en la probeta donde comprobamos que son 10 ml.
Comparación de gotas
1. Pipeta Pasteur (gota mas pequeña)
2. Pipeta automática en 10 µl ( gota mediana pequeña)
3. Pipeta graduada de 1 ml (gota mediana)
4. Pipeta volumétrica 5 ml (gota mediana grande)
5. Pipeta graduada 10 ml (Grande)
Bitácora
Tiempo Actividad
5 min Colocación del equipo de bioseguridad
10 min. Explicación del Profr.
10 min Apuntes
1 hora Desarrollo de la práctica
5 min Retirar equipo de bioseguridad
Observaciones personales
Al principio creímos que no nos daba la medida exacta, sin embargo estábamos equivocados, pues medimos mal al vaciar el líquido de la pipeta a la probeta.
Batallamos un poco con el pulso, al colocar las gotas de agua en la caja de Petri.
CONCLUSION
La práctica fue una buena experiencia, y a pesar de que estaba sencilla, la verdad es que sí batallamos. Al final lo logramos, pudimos succionar el agua y vaciarla en la probeta obteniendo la cantidad deseada.
Al colocar las gotas sobre la caja Petri de las diferentes pipetas, yo coloque la de la pipeta Pasteur y me pareció que logre controlar mejor mi pulso.
Se tiene que tener mucha determinación y destreza para pipetear.
Suscribirse a:
Entradas (Atom)
