Prueba de Aglutinacion en Sangre
Materiales:
1.-Tubo de ensaye con tapón morado
2.-Placa de porcelana excavada
3.-Wiltrobe
4.-Vasal
5.-Centrifuga
6.-Pipeta Pasteur y lóbulo
7.-Palillos de madera
8.- Torundas de algodón alcoholizadas
9.-centrifuga
10.-papel secante y para mesa de laboratorio
11.- Gradilla
12.Reactivos: Tipificadores A, b, d13.
-jeringa
Procedimiento:
Se inicio la practica con la tecnica de venopuncion se extrajo 8ml de sangre despues se traspaso al tuvo con tapon morado luego con la pipeta pasteur se punteo en la placa escabada , ya estando las gotas se le aplican una gota de reactivo tipificador A color Amarillo ,B color azul y D color trasparente se toman despues palillos de madera y se mezclan las gotas luego de esto se empeso a observar la aglutinacion que se veia como si estuviera cortada la sangre ya observada la aglutinacion se lavaron los materiales y se guardaron.
miércoles, 24 de junio de 2009
Practica #8Prueba de Reacciones Febriles en Cerologia
Prueba de Reacciones Febriles en Cerologia
Materiales:
1.-Lámina de cristal para reacciones febriles
2.-Tubo de ensaye con tapón rojo estéril
3.-Palillos de madera 2 o 3 por cada uno
4.-Torundas de algodón
5.- Centrifuga
6.- Microscopio
7.-Pipeta Pasteur con lóbulo
8.- Papel secante
9.- Papel para mesa de laboratorio
10.- Torniquete
11.-Gradillas
12.-ReactivosFebriclinHO AB Bruc. Proteus 0x19º
13.-Paciente y sangre fresca
Procedimiento:
Al inicio de esta practica se observe la técnica de venopuncion para la extracción de sangre ,se coloco la sangre ya extraida en tuvos de tapon morado y rojo, se coloco en la centrifuga el tuvo con tapon rojo para asi poderse separar el plasma ,después se saco de la centrifuga y ya con el plasma separado de coloco el plasma en un tuvo transparente ,luego en una placa de cristal escavada con una pipeta pasteur se punteo plasma y con un palillo de madera se Mezclo el plasma con observe HO A B para despues observar a trasluz la observe de aglutination , luego se observe en el microscopio en el objetivo 10x
Materiales:
1.-Lámina de cristal para reacciones febriles
2.-Tubo de ensaye con tapón rojo estéril
3.-Palillos de madera 2 o 3 por cada uno
4.-Torundas de algodón
5.- Centrifuga
6.- Microscopio
7.-Pipeta Pasteur con lóbulo
8.- Papel secante
9.- Papel para mesa de laboratorio
10.- Torniquete
11.-Gradillas
12.-ReactivosFebriclinHO AB Bruc. Proteus 0x19º
13.-Paciente y sangre fresca
Procedimiento:
Al inicio de esta practica se observe la técnica de venopuncion para la extracción de sangre ,se coloco la sangre ya extraida en tuvos de tapon morado y rojo, se coloco en la centrifuga el tuvo con tapon rojo para asi poderse separar el plasma ,después se saco de la centrifuga y ya con el plasma separado de coloco el plasma en un tuvo transparente ,luego en una placa de cristal escavada con una pipeta pasteur se punteo plasma y con un palillo de madera se Mezclo el plasma con observe HO A B para despues observar a trasluz la observe de aglutination , luego se observe en el microscopio en el objetivo 10x
Practica #7
Observacion microscopia en objetivo 100x con aceite de inmersion
Materiales
porta objetos con tincion de gram
aceite de inmersion
microscopio
Desarrollo
Una vez tenida la laminilla con el frotis se le aplica una gota de aceite de inmersión para poder observar el objetivo en 100X.En este proceso de observación microscópica tenemos la facilidad de poder observar formas esféricas y bacilos los que nos da como resultado observar las coloraciones que se presentan en la tinción de Gram.La presentación en esferas nos indica que estamos observando bacterias denominadas cocos, donde debemos investigar sus características y nombres de importancia medica.Cuando observamos bastoncitos estamos tratando de identificar bacilos donde encontraremos una gran variedad de ellos de forma estructural.
Materiales
porta objetos con tincion de gram
aceite de inmersion
microscopio
Desarrollo
Una vez tenida la laminilla con el frotis se le aplica una gota de aceite de inmersión para poder observar el objetivo en 100X.En este proceso de observación microscópica tenemos la facilidad de poder observar formas esféricas y bacilos los que nos da como resultado observar las coloraciones que se presentan en la tinción de Gram.La presentación en esferas nos indica que estamos observando bacterias denominadas cocos, donde debemos investigar sus características y nombres de importancia medica.Cuando observamos bastoncitos estamos tratando de identificar bacilos donde encontraremos una gran variedad de ellos de forma estructural.
Practica #6 tincion de gram
Tincion de gram
Materiales
Caja de petri
Portaobjetos con frotis
Algodón seco Papel secante
Mecheros de bunsen
Aceite de inmersion
Microscopio
Desarrollo
Realizamos el proceso de tincion utilizando la tincion de gram. que anteriormente ya investigamos para aplicar la tecnica correspondiente en la tincion ( 9 pasos con esta tecnica) la que se basa en el tiempo.Una vez teñida la lamina de cristal verificamos que no se queme con la tintura por lo que nos sirve el frotis y como resultado debemos elaborar otro frotis.Si la laminilla en su termino esta bien teñida acudimos a aplicamos una gota de aceite de inmersion lo montamos en la platina del microscopio lo aseguramos con las pinzas de la platina una vez asegurada realizamos el enfoque en 100X para que nuestra observación microscopica de resultado de poder visualizar las bacterias de formas esfericas y de forma de baston ambas se pueden encontrar en una sola pieza 2, 3, 4 piezas en cadenas largas y agrupadas hasta el tercer plano a estas esferas se les denomina cocos.
Materiales
Caja de petri
Portaobjetos con frotis
Algodón seco Papel secante
Mecheros de bunsen
Aceite de inmersion
Microscopio
Desarrollo
Realizamos el proceso de tincion utilizando la tincion de gram. que anteriormente ya investigamos para aplicar la tecnica correspondiente en la tincion ( 9 pasos con esta tecnica) la que se basa en el tiempo.Una vez teñida la lamina de cristal verificamos que no se queme con la tintura por lo que nos sirve el frotis y como resultado debemos elaborar otro frotis.Si la laminilla en su termino esta bien teñida acudimos a aplicamos una gota de aceite de inmersion lo montamos en la platina del microscopio lo aseguramos con las pinzas de la platina una vez asegurada realizamos el enfoque en 100X para que nuestra observación microscopica de resultado de poder visualizar las bacterias de formas esfericas y de forma de baston ambas se pueden encontrar en una sola pieza 2, 3, 4 piezas en cadenas largas y agrupadas hasta el tercer plano a estas esferas se les denomina cocos.
domingo, 21 de junio de 2009
Practica #5 frotis
FROTIS
Objetivo
Realizar un frotis de las colonias bacterianas que han crecido en los medios de cultivo, el cual deberá ser fino y delgado para poder realizar un proceso de tinción y posteriormente observarlo microscópicamente con aceite de inmersión en objetivo 100x.
Introducción
Solicitaremos los materiales necesarios para realizar la práctica, con nuestro equipo de bioseguridad ya colocado. Pediremos principalmente las cajas Petri con los medios de cultivo, tendremos el debido cuidado al utilizar los materiales y los colocaremos dentro de la zona de esterilización en medio de la mesa, y comenzaremos la práctica No 5 llamada “FROTIS”.
Índice
1.-Objetivo
2.-Introducción
3.- Marco Teórico
*Desarrollo
*Notas
*Dibujos
* Bitácora
*Observaciones personales
4.- Conclusión
5.- Fichas Bibliográficas
Marco Teórico
Materiales:
1.-Cajas Petri con medios de cultivo
2.-Asa Bacteriológica
3.-Vaso de precipitados con agua destilada con 25 ml
4.- 2 Mecheros de Bunsen
5.-Papel secante
6.- 8 portaobjetos
Desarrollo
Tomaremos las cajas Petri con los medios de cultivo y las abriremos, esterilizaremos las asas bacteriológicas con los mecheros de bunsen, tomaremos una gota de agua destilada con el asa bacteriológica y la colocaremos en el centro del portaobjetos, después toaremos una pequeña muestra de la bacteria que ha crecido en el medio de cultivo y la esparciremos con movimientos de izquierda a derecha, si el frotis queda muy grueso esterilizamos de nuevo el asa bacteriológica y le colocamos de nuevo una gota de agua destilada realizando el mismo procedimiento hasta que el frotis quede finamente delgado, que casi nos se vea más que a tras luz.
Una vez que el frotis ya quedo delgado vamos a fijarlo al portaobjetos es decir lo pasaremos por la flama del mechero sin dejarlo fijamente para evitar que las bacterias se derritan y cambien su morfología. Una vez fijado el frotis queda listo para el proceso de tinción Gram.
Tiempo Actividad
3 min. Colocar equipo de bioseguridad
5 min. Esterilizar las asas bacteriológicas
20 min Realizar frotis
3 min Fijar frotis
Observaciones
Fue un poco más difícil de lo que pensamos, pero aún así lo hicimos bien quedo el frotis delgado y fijado. Listo para la tinción Gram.
Conclusión
Fue la práctica que realizamos en menos tiempo y si nos fue suficiente, ya que terminamos justo a tiempo, si batallamos un poquito en adelgazar el frotis, pero todo resulto bien casi no se veía> A tras luz sí. Una vez listo el frotis y ya fijado los guardamos, los colocamos en papel secante y lo pegamos con tape, se las entregamos al profesor, al igual que los medios de cultivo, que se utilizaron en caso de necesitar hacer un nuevo frotis.
Ficha Bibliográfica
1.- Observaciones personales y grupales
2.- Apuntes de clase
3.- www.monografias.com
Borrador
Práctica No 5
Frotis
“Elaboración de un frotis
El alumno debe realizar un frotis con el producto teñido en las cajas Petri, el cual debe ser fino y delgado para poder realizar un proceso de tinción.
Materiales:
1.- Cajas Petri con medios de cultivo
2.- asa bacteriológica
3.-vaso de precipitados con 25 ml de agua destilada
4.- Mecheros de bunsen
5.-Papel secante
6.- 8 portaobjetos
Desarrollo
Se toma un portaobjetos limpio para poder realizar en su superficie un frotis fresco con el material de la caja Petri “bacteriológico”.
Con el asa bacteriológica se va a realizar un barrido en el portaobjetos en su parte central, esterilizando primero el asa bacteriológica en la flama del mechero, dejándola hasta rojo vivo, una vez fijado el frotis queda listo para el proceso de tinción de Gram.
Objetivo
Realizar un frotis de las colonias bacterianas que han crecido en los medios de cultivo, el cual deberá ser fino y delgado para poder realizar un proceso de tinción y posteriormente observarlo microscópicamente con aceite de inmersión en objetivo 100x.
Introducción
Solicitaremos los materiales necesarios para realizar la práctica, con nuestro equipo de bioseguridad ya colocado. Pediremos principalmente las cajas Petri con los medios de cultivo, tendremos el debido cuidado al utilizar los materiales y los colocaremos dentro de la zona de esterilización en medio de la mesa, y comenzaremos la práctica No 5 llamada “FROTIS”.
Índice
1.-Objetivo
2.-Introducción
3.- Marco Teórico
*Desarrollo
*Notas
*Dibujos
* Bitácora
*Observaciones personales
4.- Conclusión
5.- Fichas Bibliográficas
Marco Teórico
Materiales:
1.-Cajas Petri con medios de cultivo
2.-Asa Bacteriológica
3.-Vaso de precipitados con agua destilada con 25 ml
4.- 2 Mecheros de Bunsen
5.-Papel secante
6.- 8 portaobjetos
Desarrollo
Tomaremos las cajas Petri con los medios de cultivo y las abriremos, esterilizaremos las asas bacteriológicas con los mecheros de bunsen, tomaremos una gota de agua destilada con el asa bacteriológica y la colocaremos en el centro del portaobjetos, después toaremos una pequeña muestra de la bacteria que ha crecido en el medio de cultivo y la esparciremos con movimientos de izquierda a derecha, si el frotis queda muy grueso esterilizamos de nuevo el asa bacteriológica y le colocamos de nuevo una gota de agua destilada realizando el mismo procedimiento hasta que el frotis quede finamente delgado, que casi nos se vea más que a tras luz.
Una vez que el frotis ya quedo delgado vamos a fijarlo al portaobjetos es decir lo pasaremos por la flama del mechero sin dejarlo fijamente para evitar que las bacterias se derritan y cambien su morfología. Una vez fijado el frotis queda listo para el proceso de tinción Gram.
Tiempo Actividad
3 min. Colocar equipo de bioseguridad
5 min. Esterilizar las asas bacteriológicas
20 min Realizar frotis
3 min Fijar frotis
Observaciones
Fue un poco más difícil de lo que pensamos, pero aún así lo hicimos bien quedo el frotis delgado y fijado. Listo para la tinción Gram.
Conclusión
Fue la práctica que realizamos en menos tiempo y si nos fue suficiente, ya que terminamos justo a tiempo, si batallamos un poquito en adelgazar el frotis, pero todo resulto bien casi no se veía> A tras luz sí. Una vez listo el frotis y ya fijado los guardamos, los colocamos en papel secante y lo pegamos con tape, se las entregamos al profesor, al igual que los medios de cultivo, que se utilizaron en caso de necesitar hacer un nuevo frotis.
Ficha Bibliográfica
1.- Observaciones personales y grupales
2.- Apuntes de clase
3.- www.monografias.com
Borrador
Práctica No 5
Frotis
“Elaboración de un frotis
El alumno debe realizar un frotis con el producto teñido en las cajas Petri, el cual debe ser fino y delgado para poder realizar un proceso de tinción.
Materiales:
1.- Cajas Petri con medios de cultivo
2.- asa bacteriológica
3.-vaso de precipitados con 25 ml de agua destilada
4.- Mecheros de bunsen
5.-Papel secante
6.- 8 portaobjetos
Desarrollo
Se toma un portaobjetos limpio para poder realizar en su superficie un frotis fresco con el material de la caja Petri “bacteriológico”.
Con el asa bacteriológica se va a realizar un barrido en el portaobjetos en su parte central, esterilizando primero el asa bacteriológica en la flama del mechero, dejándola hasta rojo vivo, una vez fijado el frotis queda listo para el proceso de tinción de Gram.
Practica # 4 Observacion macroscopica.
Objetivo.
Observar lo que ha crecido en los medios de cultivo y realizar la medida de cada una o la mayoria de las colonias bacteriologicas que han crecido en las cajas Petri.
Desarrollo.
Materiales utilizados:
-Pie de rey
-Medio de cultivo ya sembrados.
-2 Mecheros de Bunsen
-Papel para vestir mesa.
8:00am a 8:10am
Se nos distribuyeron las cajas Petri con los medios de cultivo ya desarrollados.
8:10am a 9:00am
Se le entrego cada caja de Petri al alumno que sembro las diferentes muestras para que cada alumno oliera y describiera cada olor para su registro.
9:00am a 10:00am
Se utilizo el pie de rey para medir las colonias y registrarlo en su informe.Se registro tambien su color y olor.Al final se guardo todo de nuevo y se retiro del laboratorio.
SIEMBRAS OBTENIDAS:
Siembra 1:DX Saborada.Se sembro muestra de pies.Tiene un olor a pie,fetido.Mide 5.5 *4.2 cm.
Siembra 2:EMB.Se sembro muestra de agua contaminada.Tiene olor a fruta podrida.Mide 6.3 cm *6.7 cm.
Siembra 3:Agar verde brillante.Se sembro muestra de agua de frijoles.Huele a frijoles podridos.Mide 6.7 cm * 4cm.
Siembra 4:Salmonella y shigella.Se sembro muestra de orina.Tiene un olor dulce rancio,echado a perder.Mide 5.9 cm * 1.1 cm.
Siembra 5:Eosina y azul de metileno.Se sembro muestra de orina.Tiene un olor a acido penetrante.Mide 4.8 cm *2.7cm.
Siembra 6:Agar MacConkey.Se sembro muestra interdental.Huele una especie de olor bajo,amargo,pero leve.Mide 1 mm * 1mm.
Siembra 7:Eosina y azul de metileno.Se sembro muestra de plasma sanguineo.Tiene un olor a vomito.Un olor tenue.Mide 1 cm * 1cm.
Siembra 8:Eosina y azul de metileno.Se sembro muestra de agua fresca.Un olor a vomito,a podrido.Mide 0.5 cm * 0.5cm.
Conclusión.
Se aprendio como y que tanto pueden crecer siembras en distintos tipos de medio de cultivo.Se aprendio que tipo de olor y que color obtenian.
Observar lo que ha crecido en los medios de cultivo y realizar la medida de cada una o la mayoria de las colonias bacteriologicas que han crecido en las cajas Petri.
Desarrollo.
Materiales utilizados:
-Pie de rey
-Medio de cultivo ya sembrados.
-2 Mecheros de Bunsen
-Papel para vestir mesa.
8:00am a 8:10am
Se nos distribuyeron las cajas Petri con los medios de cultivo ya desarrollados.
8:10am a 9:00am
Se le entrego cada caja de Petri al alumno que sembro las diferentes muestras para que cada alumno oliera y describiera cada olor para su registro.
9:00am a 10:00am
Se utilizo el pie de rey para medir las colonias y registrarlo en su informe.Se registro tambien su color y olor.Al final se guardo todo de nuevo y se retiro del laboratorio.
SIEMBRAS OBTENIDAS:
Siembra 1:DX Saborada.Se sembro muestra de pies.Tiene un olor a pie,fetido.Mide 5.5 *4.2 cm.
Siembra 2:EMB.Se sembro muestra de agua contaminada.Tiene olor a fruta podrida.Mide 6.3 cm *6.7 cm.
Siembra 3:Agar verde brillante.Se sembro muestra de agua de frijoles.Huele a frijoles podridos.Mide 6.7 cm * 4cm.
Siembra 4:Salmonella y shigella.Se sembro muestra de orina.Tiene un olor dulce rancio,echado a perder.Mide 5.9 cm * 1.1 cm.
Siembra 5:Eosina y azul de metileno.Se sembro muestra de orina.Tiene un olor a acido penetrante.Mide 4.8 cm *2.7cm.
Siembra 6:Agar MacConkey.Se sembro muestra interdental.Huele una especie de olor bajo,amargo,pero leve.Mide 1 mm * 1mm.
Siembra 7:Eosina y azul de metileno.Se sembro muestra de plasma sanguineo.Tiene un olor a vomito.Un olor tenue.Mide 1 cm * 1cm.
Siembra 8:Eosina y azul de metileno.Se sembro muestra de agua fresca.Un olor a vomito,a podrido.Mide 0.5 cm * 0.5cm.
Conclusión.
Se aprendio como y que tanto pueden crecer siembras en distintos tipos de medio de cultivo.Se aprendio que tipo de olor y que color obtenian.
Practica # 3 Siembra de medios de cultivo. .
Objetivo.
El objetivo de esta practica fue para sembrar diferentes tipos de muestras,entre ellas orina,interdental,plasma sanguineo,etcetera.
Desarrollo.
10:00 AM a 10:10 AM
Se entro al laboratorio,se coloco el equipo de bioseguridad y se dieron indicaciones.
10:10 AM a 10:40 AM
Con ayuda del profesor,se realizo la extracción de sangre de 1 integrante de cada mesa para obtener una muestra de sangre fresca.
10:40 AM a 11:00 AM
Mientras la sangre coagulaba y se separaban sus componenetes,se nos entrego las cajas Petri con diferentes tipos de medio de cultivo.
11:00 AM a 12:00 PM
En este lapso de tiempo,se realizo la siembra de muestras de diferentes tipos,cada una hecha por cada miembro de la mesa.En la siembra se utilizaron muestras interdigitales,interdentales,agua fresca,suero sanguineo,agua de frijoles,agua sucia estancada y orina.Al ultimo se etiquetaron las cajas y se introducieron a la estufa de incubacion para su crecimiento.
Los tipos de estrias que se utilizaron para sembrar los diferentes tipos de muestras fueron:
Por dispersion,estrias,MacConkey y por agotamiento.
Conclusión.
En esta etapa de lo que es toda la practica,se aprendio a sembrar lo que son las muestras de cultivo y asi se aprende los diferentes tipos de siembra y esperar el crecimiento de las bacterias.
El objetivo de esta practica fue para sembrar diferentes tipos de muestras,entre ellas orina,interdental,plasma sanguineo,etcetera.
Desarrollo.
10:00 AM a 10:10 AM
Se entro al laboratorio,se coloco el equipo de bioseguridad y se dieron indicaciones.
10:10 AM a 10:40 AM
Con ayuda del profesor,se realizo la extracción de sangre de 1 integrante de cada mesa para obtener una muestra de sangre fresca.
10:40 AM a 11:00 AM
Mientras la sangre coagulaba y se separaban sus componenetes,se nos entrego las cajas Petri con diferentes tipos de medio de cultivo.
11:00 AM a 12:00 PM
En este lapso de tiempo,se realizo la siembra de muestras de diferentes tipos,cada una hecha por cada miembro de la mesa.En la siembra se utilizaron muestras interdigitales,interdentales,agua fresca,suero sanguineo,agua de frijoles,agua sucia estancada y orina.Al ultimo se etiquetaron las cajas y se introducieron a la estufa de incubacion para su crecimiento.
Los tipos de estrias que se utilizaron para sembrar los diferentes tipos de muestras fueron:
Por dispersion,estrias,MacConkey y por agotamiento.
Conclusión.
En esta etapa de lo que es toda la practica,se aprendio a sembrar lo que son las muestras de cultivo y asi se aprende los diferentes tipos de siembra y esperar el crecimiento de las bacterias.
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